Resumen
La producción de biogás representa una alternativa como fuente de bioenergía mediante la fermentación anaerobia usando como sustrato residuos orgánicos provenientes de actividades domésticas, agrícolas e industriales. Una alternativa para optimizar el proceso es caracterizar los microorganismos que participan en el proceso de producción de biogás mediante métodos moleculares. El objetivo del presente trabajo fue caracterizar molecularmente bacterias involucradas en la producción de biogás en un biodigestor flujo pistón operado con lodos de tenería. Para la identificación molecular de la población microbiana presente en el biodigestor se obtuvo el metagenóma de entrada y salida. Posteriormente se analizó la región V3 del gen 16S ribosomal universal en bacterias usando la técnica de PCR. Finalmente se obtuvo una amplificación de la región V3 en las muestras analizadas del biodigestor teniendo como resultado amplicones de aproximadamente 233 pb, con estos resultados se puede concluir que es posible la caracterización de las bacterias presentes en el biodigestor.Citas
Chi Liu, A., Yang Chou, C., Ling Chen, L. & Horng Kuo, C. (2015). Bacterial community dynamics in a swine wastewater anaerobic reactor revealed by 16S rDNA sequence analysis. Journal of Biotechnology, 194.
FAO, (2011). Fundamentos de la fermentación metanogénica. Manual de Biogás. Santiago de Chile: Proyecto CHI/00/G32.
Mussgnug, J., Klassen, V., Sclûter, A. & Kruse, O. (2010). Microalgae as substrates for fermentative biogas production in a combined biorefinery concept. Journal of Biotechnology, 150, 51-56.
Yu, D., Kurola, J.M., Lähde, K., Kymäläinen, M., Sinkkonen, A. & Romantschuk, M. (2014). Biogas production and methanogenic archaeal community in mesophilic and thermophilic anaerobic co-digestion processes. Journal of Biotechnology, 143, 54--60.
Bonilla-Rosso, G., Souza, V. & Eguiarte, L. E., (2008). Metagenómica, Genómica y Ecología Molecular: La Nueva Ecología en el Bicentenario de Darwin. Revista Especializada en Ciencias Químico-Biológicas, 11(1):41-51.
Rastogi, G. & Sani, R., (2011). Chapter 2- Molecular Techniques to Assess Microbial Community Structure, Function, and Dynamics in the Environment. Department of Chemical and Biological Engineering, South Dakota School of Mines and Technology, Rapid City, SD 57701, USA.
Palomino Camargo C. & González Muñoz Y., (2014). Técnicas moleculares para la detección e identificación de patógenos en alimentos: ventajas y limitaciones. Rev Peru Med Exp Salud Publica. 2014; 31(3):535-46.
Hollibaugh, J. T, Bano, N. & Ducklow, H. W. (2002). Widespread Distribution in Polar Oceans of a 16S rRNA Gene Sequence with Affinity to Nitrosospira-LikeAmmonia-Oxidizing Bacteria. APPLIED AND ENVIRONMENTAL MICROBIOLOGY, 68(3), 1478-1484.
Alejos, L.P., Aragón, M.C. & Cornejo, A. (s.a.). Extracción y Purificación de ADN.
Castagnino, J.M. (2000). Electroforesis Capilar. Bioquimia, 25(1), 13-22.
Chakravorty, S, Helb, D, Burday, M, Connell a, N & Alland, D. (2007). A detailed analysis of 16S ribosomal RNA gene segments for the diagnosis of pathogenic bacteria. Journal of Microbiological Methods, s 69, 330–339.
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